Проводка и изготовление срезов лимфатических узлов. Окрашивание срезов лимфатических узлов.

1

Бубенко Н.А.

Сорокин И.Е.

Никифорова Т.А.

Халупенко И.А.

Одним из актуальных медико-биологических аспектов здорового образа жизни населения является экологическое неблагополучие, которое в первую очередь сказывается на состоянии внутренней среды живого организма.

Исследования функциональной морфологии органов и систем организма способны представить объективную информацию о структурно-функциональных основах процессов адаптации и реабилитации организма.

В течение последних лет под руководством преподавателей Омского медицинского колледжа и консультативной помощи профессора кафедры анатомии человека Омской государственной медицинской академии Путаловой И.Н. студентами специальности 060110 Лабораторная диагностика проводились комплексные исследования, посвященные саногенному и патогенному влиянию экологических факторов на внутреннюю среду организма [4].

Цель настоящей работы — изучить воздействие сапропеля на лимфатические узлы лабораторных животных в эксперименте, т.е.

определить морфологические типы лимфатических узлов в условиях кормления белых крыс сапропелем.

Прежде чем приступить к эксперименту, мы составили литературный обзор о происхождении сапропеля и о саногенном влиянии данного экологического фактора на организм человека и животных.

Сапропель — от греч. «sapros» — гнилой и «pelos» — грязь, ил, органические отложения, состоящие в основном из остатков водных организмов. Начало использования человеком речных и озерных илов лежит в глубокой древности.

Сапропели — это донные илы, отложения пресноводных водоемов, состоящие из органического вещества и минеральных примесей, формирующиеся в результате биохимических, микробиологических и физико-механических процессов из остатков, населяющих озеро или пруд растительных и животных организмов, а также приносимых в водоемы водой и ветром органических частиц.

В России количество водоемов, богатых сапропелем велико, это практически неисчерпаемый природный ресурс. В основном, озера, богатые сапропелем, находятся в северо-западных областях федерации и на территории Западной Сибири — в Омской, Томской, Тюменской и Новосибирской областях, из них 75% разведанных запасов сапропеля сосредоточено в Омской области.

По мнению ученых Российской Академии наук, сапропель — продукт уникального многовекового природного синтеза остатков растительной и животной жизней, как будто специально созданный для лечения людей.

Современная наука не в состоянии получить его подобия искусственным путем. Взаимодействуя с организмом человека, лечебные грязи создают оптимальный ионный обмен между кожей и сапропелевой аппликацией.

Целебное действие сапропель оказывает на весь организм, особенно на иммунную систему, следовательно, и на лимфоузлы.

Для внутренней среды организма лимфатические узлы являются основными гомеостатирующими органами и могут рассматриваться в качестве маркеров экологического прессинга на организм. Выделяют первичные (климатогеографические, температурные и др.

) и вторичные экологические факторы, связанные с технологической деятельностью человека на региональном и планетарном уровнях.

В отношении «первичных» естественных природных экологических факторов, к которым относится и сапропель, убедительно показаны выраженные специфические изменения структуры регионарных лимфатических узлов при перемещении экспериментальных животных из одних природно-климатических условий в другие.

В физиологических условиях жизнедеятельности организма лимфатические узлы также весьма чувствительны к морфофункциональному состоянию дренируемых тканей.

Так, изменения в органах и системах в связи с биологическими ритмами организма очень тонко улавливаются лимфатическими узлами и другими лимфатическими органами.

Обнаруживая признаки морфофункционального реагирования лимфоузлов на изменения состояния внутренних органов, можно получить информацию о механизмах компенсации патологического процесса, степени повреждения органов, влиянии факторов окружающей среды на здоровье человека.

Бородин Ю.И. [2] подчеркивает, что состояние любого внутреннего органа может быть зафиксировано в регионарных лимфатических узлах как инструментах периферического иммунитета, контролирующих все системы, органы и ткани.

Применение морфологических методов позволило исследовать структурную организацию лимфатических узлов, определить тип их строения.

Размеры лимфоузлов, толщина и плотность капсулы и трабекул, ширина синусов, рисунок ретикулярной сети, количество и плотность лимфоидного вещества в фолликулах и мякотных шнурах, количественное соотношение между мозговым и корковым отделами варьирует в широких пределах. На основании выраженности признаков строения лимфоузлов Бородин Ю.И.

[3] выделил три типа лимфатических узлов: фрагментированный, компактный и промежуточный. Морфологическим критерием эффективности воздействия факторов окружающей среды служат компактный и промежуточный типы строения лимфатических узлов, а также доминирование в них тимусзависимой зоны.

Мы использовали данный методологический подход при изучении структурной организации мезентериальных лимфатических узлов, которые являются регионарными по отношению к тонкой кишке в эксперименте на 60 белых беспородных крысах-самцах половозрелого возраста в условиях кормления их сапропелем.

Материал и методы: мезентериальные лимфатические узлы белых беспородных крыс-самцов половозрелого возраста контрольной и опытной (в условиях кормления сапропелем) групп.

Гистологическую обработку материала, изготовление и окраску гистологических срезов проводили на базе централизованного патолого-анатомического отделения областной детской клинической больницы во время прохождения практики под руководством старшего лаборанта Фильчакова А.М.

Лимфатические узлы фиксировали в растворе Телесницкого, проводили обезвоживание в серии этанола возрастающей концентрации. Пропитывание и заливку материала в парафин проводили по классической схеме [5]. Парафиновые срезы лимфатических узлов получали на роторном микротоме «Microm 340Е».

Окрашивали срезы гематоксилином-эозином и по методу Ван-Гизона. Микроскопическое изучение срезов проводили на базе колледжа, исследовали от 6 до 10 окрашенных срезов каждого лимфоузла в опытной и контрольной группе животных.

При микроскопии гистологических препаратов изучали структурную организацию лимфатических узлов: с использованием окулярной сетки определяли тип строения лимфатического узла и соотношение в нем Т- и В-зависимых зон. Удельную площадь Т- и В- зависимых зон в корковом веществе лимфоузлов определяли методом точечного счета [1].

Использовали квадратную тест-решетку, узлы которой образуют систему точек. Затем при составлении таблицы определяли типы лимфоузлов, соотношение Т- и В- зависимых зон в опытной и контрольной группе животных.

Заключение: Применение морфологических методов позволило исследовать структурную организацию лимфатических узлов в целях определения типа строения лимфатических узлов. У крыс опытной группы выявлены преимущественно два типа строения лимфатических узлов — компактный и промежуточный, а также доминирование в них тимусзависимой зоны.

Проводка и изготовление срезов лимфатических узлов. Окрашивание срезов лимфатических узлов.

Сравнительный анализ типов лимфоузлов опытной и контрольной групп

Выводы: наличие у крыс опытной группы преимущественно двух типов строения лимфатических узлов (компактного и промежуточного) говорит в пользу саногенного влияния воздействующего фактора, а именно, сапропеля.

Кроме того, доминирование в лимфоузлах тимусзависимой зоны также подтверждает оздоровительное воздействие сапропеля на лимфатические узлы, и значит, общее оздоравливающее влияние сапропеля на ткани, дренируемые данными лимфатическими узлами.

Основываясь на этих выводах, мы проанализировали имеющиеся литературные данные по применению сапропеля в лечебных целях.

Спектр применения сапропелей широк, он включает многие сотни недугов всех систем человека, а также рекомендуется в качестве применения с лечебно-оздоровительной целью для комплексной терапии заболеваний ЖКТ, опорно-двигательного аппарата, нервной системы, заболеваний кожи и подкожной клетчатки, гинекологической и урологической патологии и т.д. Клиническими исследованиями доказана способность сапропеля влиять на обмен веществ, стимулировать тканевое дыхание, усиливать синтез нуклеиновых кислот, белков, метаболизм углеводов, липидов и активность ферментов антиоксидантной системы крови. Применять сапропель несложно. Для этого не требуется специального оборудования и медицинской подготовки, это просто и доступно по цене.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

  1. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия: Руководство. — М.: Медицина, 1990. — 384 с.
  2. Бородин Ю.И. Лимфатические узлы в условиях экологически значимых воздействий на организм. — Морфология, СПб, 1992, № 2.
  3. Бородин Ю.И. Индивидуальные особенности анатомической организации подколенных лимфоузлов собаки и транспортная функция последних/ Вопросы экспериментальной морфологии лимфатической системы и соединительнотканного каркаса. Новосибирск, 1968.
  4. Путалова И.Н. Морфофункциональное обоснование детоксикационных и сорбционных свойств голубой глины/ Путалова И.Н., Артемьев В.Н. с соавт. Омский научный вестник, 2004, № 1, с.82.
  5. Семченко В.В., Барашкова С.А., Ноздрин В.Н., Артемьев В.Н. Гистологическая техника: учебное пособие. — 3-е изд., доп. и перераб. — Омск-Орел: Омская областная типография, 2006. — 290 с.

Библиографическая ссылка

Бубенко Н.А., Сорокин И.Е., Никифорова Т.А., Халупенко И.А. ОЗДОРОВИТЕЛЬНОЕ ВОЗДЕЙСТВИЕ САПРОПЕЛЯ НА ЛИМФОУЗЛЫ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ // Успехи современного естествознания. – 2010. – № 7. – С. 33-36;
URL: https://natural-sciences.ru/ru/article/view?id=8409 (дата обращения: 14.05.2022). Проводка и изготовление срезов лимфатических узлов. Окрашивание срезов лимфатических узлов.

Проводка и изготовление срезов лимфатических узлов. Окрашивание срезов лимфатических узлов

Для обеспечения соответствующих требований проводки, изготовления срезов, их окраски и иммуно-гистохимических исследований лаборатории обязательно должны постоянно проводить контроль качества своих реактивов и оборудования. Важным в гематопатологии является определение морфологической структуры клетки, а из-за плохих фиксации, проводки и изготовления срезов она достаточно легко может быть искажена и, таким образом, более трудна для понимания.

Значительное влияние на цитологические и гистологические характеристики оказывает толщина срезов; оптимальной является толщина 3—5 мкм. Наиболее широко используемой окраской в гистопатологии и зачастую единственной в диагностике лимфатических узлов является гематоксилин и эозин (ГЭ).

Окраска по Гимза дополняет другие гематопатологические характеристики и на большей части Европейского континента является окраской выбора. Она выявляет базофилию и эозинофилию, что помогает в идентификации бластных клеток, плазмоцитов, эозииофилов и тучных клеток.

При использовании этой методики необходимо обращать внимание на качество окраски и учитывать рН реактивов; иначе может появиться однообразное бледно-голубое окрашивание среза с малой диагностической информативностью.

Информативным в гематопатологии является и окрашивание по методу ШИК.

Читайте также:  Лечение гестоза. лечение гестоза в зависимости от тяжести. схема лечения гестоза.

Оно выявляет включения внутриядерного IgM (тельца Дотчера), базальпую мембрану и основное вещество, аналогичное таковому вокруг кровеносных сосудов в ангиоиммунобластной Т-клеточной лимфоме.

Окраска ретикулина может представлять ценность при определении обшей структуры лимфатического узла, выявлении фолликулярное™, структуры синусов и кровеносных сосудов.

Проводка и изготовление срезов лимфатических узлов. Окрашивание срезов лимфатических узлов.

В ряде лабораторий все описанные выше окраски используются в наборе для исследования лимфатических узлов в обязательном порядке.

Однако в настоящее время наблюдается тенденция перехода непосредственно от окраски срезов гематоксилином и эозином к иммуногистохимическому исследованию, тогда как дополнительное использование одной или более окрасок могло бы иметь большую диагностическую ценность.

Опыт работы и хорошее качество гистологических препаратов позволяют диагностировать многие из простых лимфом уже на морфологическом уровне.

Однако в практической деятельности в большинстве случаев трудно отнести выявлямыс изменения к какой-либо категории без помощи иммуногистохимического исследования.

Даже в биопсиях, которые диагностируются с определенной уверенностью морфологически (такие как диффузная крупноклеточная лимфома), иммуногистохимические данные зачастую дают дополнительную прогностическую информацию.

Поэтому во многих лабораториях установилась практика выполнять подтверждающее иммуногистохимическое исследование при всех биопсиях лимфом.

Цена этого оказывается незначительной, если сопоставить помошь в постановке точного диагноза и стоимость лечения.

К сожалению, в развивающихся странах, где приобретение и хранение антител оказывается зачастую проблематичным, а цены немалыми, иммуногистохимическое исследование с диагностической целью практически не выполняется.

В практической деятельности к нам нередко поступают биопсии от патологов, поставивших приемлемый морфологический диагноз, но смущенных последующим иммуногистохимическим исследованием.

Во избежание этого патологам следует знать характеристики антител и специфичность их реактивности. Лаборатория должна быть предметом постоянного контроля качества.

Для большинства антител, используемых в гемопатологии, в подлежащих исследованию тканях существуют внутренние контроли (реактивные В- и Т-клегки, гистиоциты и т.д.).

Для антигенов, обычно не экспрессируемых в нормальных и реактивных тканях, таких как анапластическая крупноклеточная киназа 1 (ALK-1), необходимо исследование внешних контрольных тканей. Следует быть осторожными со срезами, которые выглядят однообразно голубыми; обычно это указывает на технические недостатки.

В последнее десятилетие иммуногистохимические методы значительно усовершенствованы в связи с промышленным изготовлением больших количеств «сильных» антител и развитием методик по антигенному восстановлению.

— Также рекомендуем «Дифференцировка лимфом. В-клеточная лимфома.»

Оглавление темы «Лимфатический узел. Исследование лимфатического узла.»: 1. Исследование лимфатического узла. Правила взятия и обработки лимфатического узла. 2. Пункционные биопсии. Биопсии целых лимфатических узлов. 3. Проводка и изготовление срезов лимфатических узлов. Окрашивание срезов лимфатических узлов. 4. Дифференцировка лимфом. В-клеточная лимфома. 5. Маркеры В-клеточных лимфом. Диагностика Т-клеточных лимфом. 6. Маркеры Т-клеточных лимфом. Признаки Т-клеточных лимфом. 7. NK-клеточные лимфомы. Лимфома Ходжкина. 8. Маркеры пролиферации клеток. Смешенные маркеры клеток. 9. Исследование биопсий. С чего начать исследование биопсий. 10. Оценка строения синуса. Оценка капсулы лимфатического узла.

ИГХ| Блог UNIM

После того, как выбран метод забора материала от пациента (биопсия, оперативное вмешательство в объеме удаления органа), все выделенные фрагменты должны быть как можно быстрее доставлены в лабораторию патоморфологии.

Скорость необходима для того, чтобы приблизить пациента к получению диагноза и незамедлительно начать проведение того или иного терапевтического курса.

Ведь существует ряд опухолей (например, некоторые лимфомы), при которых счет идет на дни, а иногда на часы.

Весь материал необходимо погрузить в забуференный 10% формалин в соотношении 1:10 (одна часть материала к 10 частям формалина). Это позволяет непосредственно после операции начать фиксацию тканей, предотвратить их распад и, соответственно, сохранить все структуры материала в неизменном виде до момента просмотра патоморфологом.

Следует знать, что каждый отдельно выделенный фрагмент должен быть помещен в отдельный контейнер с маркировкой. Например, нефрэктомия (удаление почки) с резекцией (иссечением) диафрагмы и выделением регионарных лимфатических узлов.

Отдельно помещается почка, отдельно – резецированная часть диафрагмы, отдельно – лимфатические узлы. Или: лимфатические узлы брюшной полости, образование средостения, шейные лимфатические узлы.

Недопустимо «смешивать» материал в одном контейнере.

После фиксации, которая занимает от нескольких часов до, что редко, суток, материал отправляется в проводку. На этом этапе он проходит через различные спирты или специализированные растворы, что позволяет подготовить его к работе (обезжирить и дополнительно фиксировать). Существует несколько способов проводки материала. Основные – вакуумная проводка и экспресс.

Экспресс проводка длится от 1,5 до 3-х часов, пригодна для любого вида материала и позволяет в наиболее краткие сроки получить готовый к работе образец.

Вакуумная проводка длится до 12 часов, позволяет подготовить различные типы тканей, в том числе и наименее фиксированные, а также позволяет «загружать» материал на выходные и получать его в готовом виде в понедельник, что экономит время.

После проводки все образцы заливают в парафин в специальные формы (гистологические кассеты, парафиновые блоки), в которых они застывают. Здесь (в парафине) весь материал хранится вечно.

После заливки в парафин материал поступает в кабинет к лаборантам, где и происходит один из самых важных этапов работы – приготовление гистологических препаратов. На специальных аппаратах – микротомах – лаборант делает срезы с парафиновых блоков толщиной до 1,0мкм и укладывает их на специальные гистологические стекла.

Недаром здесь употреблены слова «важный этап». На сегодняшний момент невозможно представить ни одну лабораторию без хороших лаборантов, на 100% профессионально владеющих своими навыками. Без их полной самоотдачи весь последующий этап (а именно работа врача) сводится на нет.

От хорошо приготовленного препарата зачастую зависит половина успеха в постановке диагноза. И это не просто слова.

Очень важно получить срез нужной толщины, где клетки лежат в один слой, а не накладываются друг на друга в несколько слоев, создавая ошибочную гиперклеточную картину. Важно видеть весь срез полностью, а не «расплывшийся» или срезанный наполовину или «в складку».

Все эти моменты значительно затрудняют процесс диагностики и требуют повторного приготовления препаратов необходимого качества, что так же оттягивает момент постановки диагноза.

После укладывания срезов на стекло (с одного блока один срез на одно стекло) препараты проходят этап рутинной окраски. В настоящее время это окраска гематоксилином и эозином на первом этапе. Затем окрашенные срезы закрываются под покровную пленку, что сохраняет их от повреждения, и подаются врачу. Происходит первичный этап диагностики – описание гистологической картины.

Нередко уже на данном этапе при типичной картине можно выставить тот или иной диагноз. Обычно это касается тех случаев, когда материал не содержит опухоли, неинформативен или представлен характерным доброкачественным образованием или же стандартным патологическим процессом (например, воспалением).

Однако в большинстве случаев, особенно в диагностике злокачественных процессов, требуется еще несколько этапов работы.

Таковыми являются специальные гистохимические окраски и иммуногистохимическое исследование.

В настоящее время существует множество гистохимических техник, позволяющих выявить тот или иной специфический патологический процесс.

Избыточный фиброз (окраска трихромом по Массон или импрегнация серебром), отдельные болезни накопления или наличие специфических гранул в клетках (PAS), туберкулез (окраска по Циль-Нильсену) и т.д.

На этом нередко заканчивается весь процесс и диагноз финализирован.

Но описанная простота диагностики лишь кажущаяся. Зачастую патоморфолог сталкивается с опухолями, не имеющими типичной гистологической картины или же не относящимися к определенной их группе.

Таковыми являются мелкокруглоклеточные опухоли (лимфомы, нейробластомы, рабдомиосаркомы, нейроэндокринные карциномы и др.), веретеноклеточные опухоли (гемангиомы, шванномы, нейрофибромы, гистиоцитарные саркомы, лейомиосаркомы и т.п.

), а так же различные виды аденокарцином или метастазы из невыявленного первичного очага. Прогноз у каждой из приведенных для примера опухолей различен, каждая из них имеет свой прогноз, и для каждой из них свой протокол лечения.

Гистологическая картина у них может быть практически одинаковой. И для того, чтобы понять, с чем же мы имеем дело, применяется третий этап диагностики – иммуногистохимическое исследование.

Данный метод основан на использовании определенных белков (антител), которые реагируя с другими белками (антигенами) опухоли, дают определенный тип реакций (ядерная, цитоплазматическая, мембранная), видимый после окрашивания хромогеном.

Практически для каждой опухоли в настоящее время существует набор характерных антител (так называемая панель), применяя которую можно подтвердить или же опровергнуть тот или иной диагноз. Существует несколько способов проведения иммуногистохимического исследования, в том числе — ручной.

Читайте также:  Пробифор - инструкция по применению, аналоги, отзывы и формы выпуска (капсулы или таблетки, порошок 500 млн. кое) лекарства для лечения поноса, аллергии у взрослых, детей (в том числе грудничков и новорожденных) и при беременности пробиотика

Однако этот метод не исключает человеческий фактор и имеет высокий риск ошибок. Это обусловлено тем, что качество и достоверность реакций непосредственно зависит от того, какое антитело и на какое стекло нанесено в то или другое время рукой человека. Следовательно, усталость, невнимательность, забывчивость имеют место быть.

Поэтому от такого способа проведения иммуногистохимического исследования отказались уже давно в большинстве лабораторий. Если же вы с ним столкнулись, то вероятность ошибочно выставленного диагноза велика.

Полностью автоматизированному процессу, в котором практически полностью исключен человеческий фактор, на данном этапе развития медицины отдается первое место. Применение самого современного оборудования, заведомо стандартизированных реагентов и лицензированных антител, позволяет на 100% достоверно выставить диагноз в каждом конкретном индивидуальном случае.

Применение иммуногистохимического исследования возможно не только для постановки диагноза. Данный вид исследования применяется и для определения возможности проведения таргетной (специфической) терапии, а также для определения степени злокачественности образования. Или, в случае метастазов из невыявленного первичного очага, предположить источник метастазирования.

Стоимость и срок исследования

* Организация и оплата доставки сырого материала (не в блоках) осуществляется клиентом.

По всем возникшим вопросам Вы можете проконсультироваться у нашего медицинского администратора по телефону: 8-800-555-92-67 или написать нам в WhatsApp: +7 925 740 05 87

Материалы конгрессов и конференций

НУЖНА ЛИ БИОПСИЯ СИГНАЛЬНЫХ ЛИМФАТИЧЕСКИХ УЗЛОВ У БОЛЬНЫХ РАКОМ МОЛОЧНОЙ ЖЕЛЕЗЫ

В.Ф. Семиглазов, С.Г. Петровский, С.В. Канаев, В.В. Семиглазов, В.Г. Иванов, А.А. Орлов, Р.М. Палтуев, П.В. Криворотько, Н.Ш. Нургазиев, А.С. Арзуманов ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н.Н. Петрова» Минздрава России, Санкт-Петербург ЦНИРРИ МЗ РФ, Санкт-Петербург

Благодаря маммографическому скринингу резко возрастает число больных раком молочной железы (РМЖ) с непораженными метастазами лимфоузлами, у которых «классическое» удаление всех уровней лимфоузлов является избыточной калечащей процедурой. В этих условиях и сформировалась методология биопсии сигнальных (sentinel) лимфатических узлов.

В последние годы появилось ряд методик более точного дооперационного определения состояния регионарных лимфатических узлов: прямая и непрямая лимфосцинтиграфия, цветная лимфоэхография, позитронно-эмиссионная томография (PET). Однако все эти методики характеризует высокая частота (до 30%) ложноотрицательных заключений в отношении метастатического поражения регионарных лимфатических узлов.

Биопсия сигнальных лимфоузлов разрабатывается с целью определения состояния подмышечных лимфоузлов без удаления большей части клетчатки подмышечной области. Сигнальный лимфоузел определяется как первый лимфоузел на пути лимфооттока.

Отсутствие метастазов в сигнальных лимфоузлах теоретически свидетельствует о нормальном статусе остальных лимфоузлов регионального коллектора, исключая необходимость выполнять полную подмышечно-подключичную лимфаденэктомию.

С момента появления органосохраняющих операций биопсия сигнальных лимфоузлов при раке молочной железы — второе наиболее значимое достижение в хирургическом лечении.

Появление этой методики привело к уменьшению частоты осложнений, которые нередко возникают после подмышечно-подключичной лимфаденэктомии, сокращению времени госпитализации и стоимости лечения, более точному определению показаний к назначению адъювантной терапии.

Методика биопсии сигнальных лимфоузлов развивалась быстро, поэтому в настоящее время существует большое разнообразие в технике её выполнения, но нет стандартов. Существует многочисленные спорные вопросы относительно оптимального метода идентификации сигнальных лимфоузлов, обнаружения микрометастазов и ограничения выполнения полной подмышечно-подключичной лимфаденэктомии.

Таким образом, биопсия сигнальных лимфоузлов все ещё остается экспериментальным методом и не вводится в широкую клиническую практику в большинстве институтов.

В то же время растущие требования пациентов выполнять менее инвазивные процедуры побуждает иногда принять биопсию сигнальных лимфоузлов без последующей подмышечно-подключичной лимфаденэктомии как стандарт.

В этой связи последовательность метода и отбор пациентов для выполнения биопсии приобретает большое значение.

Сигнальные лимфоузлы могут быть обнаружены с помощью синего контраста или радиоизотопа, или при использовании комбинации «краситель + изотоп». Продолжаются споры о том, какой метод является лучшим.

На большом материале Cox сообщает, что синий краситель помогает обнаружить сигнальные лимфоузлы у 80% пациентов, а радиоизотоп – у 89% пациентов.

Комбинация красителя и изотопов повышает частоту обнаружения сигнальных лимфоузлов до 96%.

Cody обнаруживал сигнальные лимфоузлы контрастно-визуальным методом у 81% пациентов, изотоп-ассоциированным методом – у 87%, при комбинации методов – у 95%.

В многоцентровом исследовании Японского Общества Рака молочной железы сигнальные лимфоузлы были успешно определены у 94% пациентов при использовании комбинированного способа и только у 74% пациентов при контрастно-визуальном методе.

Подобные результаты сообщаются в обзоре Cody и в мета-анализе Miltenburg, где показана высокая частота обнаружения сигнальных лимфоузлов при комбинированной методике.

Рандомизированные клинические исследования были проведены для сравнения результатов комбинированного и контрастно-визуального методов. Morrow не обнаружил достоверных различий между этими методами в частоте обнаружения сигнальных лимфоузлов (88% и 86% соответственно) и во времени, необходимом на выполнение процедуры (8,2 мин. и 9,6 мин. соответственно).

Наиболее важным фактором, предсказывающим успех идентификации сигнальных лимфоузлов, было число выполненных биопсий хирургом. Тем не менее, их вывод об отсутствии преимуществ комбинированной методике остаётся спорным.

Данные о частоте обнаружения сигнальных лимфоузлов с помощью комбинированного метода в этом исследовании были относительно низкими по сравнению с другими исследованиями.

Применение радиоизотопов, кроме того, может иногда приводить к меньшему размеру разреза и меньшей по объёму диссекции. В настоящее время большинство исследователей полагают, что контрастно-визуальный и изотоп-ассоциированный методы дополняют друг друга, и обнаружение сигнальных лимфоузлов является более успешным при комбинации этих методов.

Для биопсии сигнальных лимфоузлов было протестировано большинство красителей. Синий изосульфан доступен в США, тогда как в Европе широко используется запатентованный сине-фиолетовый контраст.

Синий изосульфан представляет собой моно натриевую соль 2,5-дисульфонат трифенилметан, тогда как запатентованный сине-фиолетовый контраст — это трифенилметан, похожий по структуре на синий изосульфан.

Биохимически оба агента похожи друг на друга, при этом различий в способности определять сигнальные лимфоузлы не обнаружено.

В ряде исследований применялись и другие красители, включая метиленовый синий, зелёный индоцианин и индигокармин.

Однако при использовании метиленового синего может возникать жировой некроз, поэтому его не следует применять у пациенток, которым планируется органосохраняющая операция.

По-видимому, до получения результатов соответствующих клинических исследований по сравнительному изучению этих красителей хирурги могут использовать любой из указанных контрастов.

Вопрос об оптимальном размере частиц изотопов для биопсии сигнальных лимфоузлов остаётся дискуссионным. Одним из наибольших потенциальных препятствий является то, что малые по размеру частицы могут пройти сквозь сигнальные лимфоузлы и пометить последующие лимфоузлы.

Частицы размерами от 3 до 30 нм считаются эффективными для лимфосцинтиграфии, но идеальный радиоизотоп для биопсии сигнальных лимфоузлов, безусловно, отличается от изотопов, оптимизированных для визуализации всех лимфоузлов при сцинтиграфии.

При большом размере частиц появление изотопа в несигнальных лимфоузлах встречается редко, с другой стороны происходит низкий лимфоотток изотопа от места инъекции.

Использование средних по размеру частиц изотопа (от 200 до 1000 нм) предпочтительно, так как при этом достигается относительно высокая частота идентификации сигнальных лимфоузлов, и только один или два сигнальных лимфоузла могут быть обнаружены даже на следующие сутки после инъекции радиоизотопа. Этот подход при выполнении биопсии сигнальных лимфоузлов позволяет избежать необоснованного удаления несигнальных лимфоузлов.

Радиоизотоп по лимфопутям попадает и концентрируется в сигнальных лимфоузлах, создавая «горячее пятно» по отношению к окружающим тканям. Время инъекции не является критическим, однако оно должно быть адекватным, для того чтобы радиоизотоп попал в сигнальный лимфоузел. Рациональное временное окно для обнаружения сигнальных лимфоузлов от 2 до 24 ч от момента инъекции радиоизотопа.

Доза радиоизотопа варьирует от 7 до 370 MBq. Krag рекомендует признать стандартом активность в 37 MBq, хотя он изначально использовал дозу в 15 MBq.

Он предположил, что использование активности 37 MBq (1mCi) обеспечивает легкое обнаружение сигнальных лимфоузлов с помощью γ-щупа.

Однако и при дозе в 11 MBq (0,3 mCi) были показаны одинаково эффективные результаты у большинства пациентов при перитуморальном введении изотопа.

В других исследованиях сигнальные лимфоузлы были обнаружены при помощи γ-щупа даже через 24 ч после инъекции изотопа 7 MBq (0,2 mCi), меченного 99m Tc коллоида альбумина. Меньшая доза изотопа считается предпочтительной, так как уменьшает влияние большой радиоактивности за счет эффекта засвечивания в месте введения изотопа и избавляет от лишней лучевой нагрузки хирурга и медицинский персонал.

Способом введения красителя и/или радиоизотопа при биопсии сигнальных лимфоузлов при раке молочной железы являются внутриопухолевая, околоопухолевая (паренхимальная) или подкожная (внутрикожная, субареолярная) инъекция.

Оптимальное место инъекции красителя или изотопа для обнаружения сигнальных лимфоузлов остаётся предметом споров. Так как целью биопсии сигнальных лимфоузлов является определение того первого лимфоузла, который напрямую дренирует отток из опухоли, то есть смысл вводить краситель в саму опухоль.

Читайте также:  Косоглазие вследствие поражения черепных нервов. Кавернозный синус и косоглазие.

Но при этом существует потенциальная опасность диссеминации опухоли по ходу введения иглы.

В большинстве ранних исследований при биопсии сигнальных лимфоузлов при раке молочной железы инъекцию производили в паренхиму непосредственно вокруг опухоли.

Однако при этом могут быть технические трудности из-за «эффекта засвечивания» от места перитуморального введения, особенно при локализации опухоли в верхне-наружном квадранте.

Следовательно, необходимо изменить место введения с целью уменьшения «эффекта засвечивания» и увеличения частоты обнаружения сигнальных лимфоузлов. Было проведено несколько исследований, в которых краситель или радиоизотоп вводился подкожно или внутрикожно в проекции опухоли или в ткань под ареолой.

Идея подкожного или внутрикожного введения базируется на представлении о том, что кожа, покрывающая ткань молочной железы, как и сама ткань, имеет одно эмбриональное происхождение и обладает одним лимфатическим дренированием.

Borgstein использовал внутрикожное введение красителя и введение радиоизотопа вокруг опухоли, чтобы продемонстрировать полное соответствие между лимфатическим дренированием ткани молочной железы и покрывающей кожи.

Veronesi и Roumen сообщают, что сигнальные лимфоузлы при кожном введении радиоизотопа могут предсказывать статус остальных подмышечных лимфоузлов также, как и при перитуморальном введении.

Сходные данные показал Linehan: лимфа из кожной и паренхимальной лимфатической сети попадает в одни сигнальные лимфоузлы у большинства пациенток. В этих исследованиях изотоп-ассоциированный метод сопровождался обнаружением сигнальных лимфоузлов у 78% пациенток при перитуморальном введении и в 97% случаев при внутрикожном введении (p

Анализ лимфогенного метастазирования рака толстой кишки I-III стадии по результатам D3 лимфодиссекции

Данные представлены в виде: среднее значение±стандартное отклонение (минимальное значение — максимальное значение), если не указано иное.

При сравнении межгрупповых параметров для категориальных значений применялся точный тест Фишера, для сравнения количественных показателей — «t-тест» Стьюдента. Статистически значимыми считали результаты, при которых значение р4, была наибольшей среди групп больных раком ППОК и ПК (50% и 43% соответственно).

Обращает на себя внимание, что у больных раком ППОК все метастатически пораженные лимфатические узлы были периколическими (I порядка), среди лимфатических узлов второго и третьего порядков (промежуточных и апикальных) при гистологическом исследовании пораженных найдено не было.

В препаратах рака ЛПОК и ПК лимфогенные метастазы были определены среди лимфатических узлов как первого, так и второго порядков. У двоих больных раком ПК был обнаружен феномен «скип-метастазирования».

У одного из них в удаленном препарате после низкой передней резекции из 29 найденных лимфатических узлов метастазы опухоли были выявлены всего в двух — одном лимфатическом узле второго порядка и одном лимфатическом узле третьего порядка (из зоны парааортальной лимфодиссекции).

Другому пациенту была выполнена интерсфинктерная брюшно-анальная резекция прямой кишки с двусторонней латеральной лимфо-диссекцией. В удаленном препарате было найдено 24 лимфатических узла: 15 промежуточных, 1 апикальный и конгломерат из 5 лимфатических узлов в удаленной жировой клетчатке правого запирательного пространства. Метастазы опухоли были обнаружены только в последнем конгломерате.

Доля метастатически пораженных среди всех найденных лимфатических узлов у всех больных раком ППОК составила лишь 1,9%, что незначительно меньше этого показателя при раке ЛПОК (2,8%, р=0,36) и достоверно меньше, чем при раке ПК (4,8%, р=0,011).

Среднее значение индекса метастазирования среди пациентов с III стадией заболевания было наименьшим при локализации опухоли в ППОК (0,07±0,04), незначительно большее среднее значение этого индекса отмечено при расположении опухоли в ЛПОК (0,09±0,07) и наибольшее его среднее значение получено у больных раком ПК (0,16±0,13). Среднее значение ИМ в общей когорте пациентов составило 0,13±0,11 (0,03-0,38). При изучении распределения пациентов по квартилям индекса метастазирования отмечается, что у всех больных раком ППОК III стадии значение ИМ меньше значения третьего квартиля (

Лимфография

Лимфография – это способ диагностики лимфатической системы. Подразумевает использование контрастного препарата, а также рентгена. Такой способ диагностирования называют еще рентгенолимфографией. Этот метод диагностирования позволяет выяснить состояние лимфатической системы, обнаружить увеличение лимфоузлов или другие изменения в этой локации.

Главная задача данного метода направлена на обнаружение отличий между злокачественными поражениями лимфатических узлов и их воспалительными процессами. По статистическим данным, именно этот метод диагностики помогает вовремя обнаружить до 40 % заболеваний, связанных с лимфатической системой и представляющих реальную угрозу жизни пациента.

Показания к проведению диагностики данным методом

Пройти диагностирование рекомендуется в тех случаях, когда пациент обнаруживает в своем организме какие-либо признаки, прямо или хотя бы косвенно указывающие на наличие проблем с лимфатической системой:

  • воспаления лимфососудов (даже незначительные);
  • патологии лимфоузлов;
  • отеки конечностей;
  • расстройство циркуляции и оттока крови по венам конечностей.

Заболевания, которые помогает обнаружить лимфография

  • Лимфаденит. Причиной его зарождения и развития является инфекция.
  • Лимфогранулематоз. Это злокачественное заболевание. Причем раковая ткань возникает из лимфоцитов.
  • Лимфолейкоз. Это злокачественная клональная лимфопролиферативная патология.
  • Лимфосаркома. Также злокачественная опухоль, имеющая определенный тип происхождения.
  • Ретикулосаркома. Это заболевание представляет собой одну из разновидностей саркомы.

Противопоказания

Данный вид диагностики не проводится при наличии следующих проблем и заболеваний:

  • острый период вирусных или инфекционных заболеваний;
  • патологии сердца, печени, почек или легких;
  • непереносимость йода;
  • тяжелое состояние больного;
  • кахексия.

В качестве альтернативы врачи рекомендуют провести обследование посредством пальпации на обнаружение патологий лимфатической системы в тех местах, где узлы близко расположены к коже.

Подготовка к процедуре диагностики

Подготовка к проведению диагностики лимфатических сосудов включает в себя выполнение аллергической пробы на наличие непереносимости контрастного препарата. Перед самой процедурой необходимо выполнить опорожнение мочевого пузыря. За 12 часов до проведения процедуры не рекомендуется принимать пищу. В остальном никаких особых указаний нет.

Способы проведения диагностики

Процедура может проводиться несколькими способами. Метод выполнения диагностирования устанавливается лечащим врачом после оценки состояния пациента. Все эти варианты объединяют ощущения пациента, которые он будет испытывать во время процедуры.

После введения препарата может несильно подняться температура, кто-то жалуется на жар в теле. В первые сутки после осмотра могут остаться ощущение тошноты, головокружение, легкая дезориентация. На второй и, самое позднее, третий день данные симптомы полностью исчезают. Цена на лимфографию также может зависеть от выбора способа проведения процедуры.

Прямая лимфография

Это введение контрастного препарата непосредственно в лимфатический сосуд. Является наиболее распространенным методом диагностирования среди онкологов, так как считается наименее травматичным. Прямое диагностирование может выполняться посредством лимфаденографии (предполагает ввод вещества в лимфоузел), а также через введение вещества в сосуд уже после процедуры окрашивания и пункции.

Непрямая лимфография

Также известна как радиоизотопная или лимфосцинтиграфия. При таком методе контрастная жидкость вводится в мышечную массу, откуда она попадает в лимфосистему.

Радионуклидная лимфография

При данном методе диагностики вещество вводится прямо в лимфатическую систему.

Под кожу вводится радиофармацевтическое вещество, которое накапливается под поверхностью дермы, излучая при этом небольшие (допустимые) дозы радиации.

После введения препарат распространяется по лимфатическим сосудам. Для получения лимфограммы используются мелкодисперсные вещества – коиноль, коинд или лимфоцис.

Результаты диагностики

Лимфограмма дает возможность получить развернутый ответ о состоянии собственной лимфатической системы. При наличии каких-либо отклонений от нормы врачи сразу смогут найти и обнаружить патологию, назначив своевременное лечение.

Лимфографию лимфатических сосудов рекомендуется проводить при малейших подозрениях на наличие отклонений или заболеваний. Диагностика поможет определить общее состояние пациента и избежать серьезных проблем со здоровьем, которые могут возникнуть в дальнейшем.

Может выполняться лимфография как нижних конечностей, так и верхних (в зависимости от того, какие проблемы испытывает пациент). Для получения дополнительной информации рекомендуется пройти консультацию у врача-терапевта.

Преимущества клиники

Преимущества онкологического центра «Sofia»:

  • Высокий уровень подготовки специалистов. В онкологическом центре «Sofia» лимфографию проводят только опытные профессионалы, которые регулярно повышают свою квалификацию и проходят стажировки в клиниках Израиля и США.
  • Индивидуальный подход. Каждый человек, который хочет проверить систему лимфатических сосудов при помощи лимфограммы, может рассчитывать на внимательное отношение со стороны врачей и всего медицинского персонала онкологического центра «Sofia».
  • Удобное расположение. Онкологический центр «Sofia» находится в Москве (ЦАО). В непосредственной близости от нас расположено сразу несколько станций метро: «Новослободская», «Тверская», «Чеховская», «Белорусская» и «Маяковская».

Запись на прием

Для того чтобы сделать лимфограмму или получить ответы на дополнительные вопросы относительно других диагностических процедур в онкологическом центре «Sofia», достаточно отправить онлайн-заявку или позвонить специалистам по телефону +7 (495) 775-73-60.

Ссылка на основную публикацию
Adblock
detector