Диагностика протей. микробиологическая диагностика протей. выявление протей. лечение протейной инфекции. протейный бактериофаг.

Синонимы, аналоги Статьи

ИНСТРУКЦИЯ по медицинскому применению лекарственного препарата

Бактериофаг протейный

Торговое наименование препарата

Бактериофаг протейный

Лекарственная форма

раствор для приема внутрь, местного и наружного применения

Состав

Препарат представляет собой стерильный фильтрат фаголизатов бактерий Proteus vulgaris и Proteus mirabilis. Вспомогательное вещество: консервант — 8-гидроксихинолина сульфата моногидрат — 0,0001 г/мл (в пересчете на 8-гидроксихинолина сульфат, содержание расчетное).

Описание

Представляет собой прозрачную жидкость желтого цвета.

Фармакотерапевтическая группа

МИБП — бактериофаг

Фармакодинамика:

Препарат обладает способностью специфически лизировать бактерии Proteus.

Лечение и профилактика гнойно-воспалительных и энтеральных заболеваний вызванных бактериями Р. vulgaris и Р. mirabilis в составе комплексной терапии:

  • — заболевания уха горла носа дыхательных путей и легких (воспаления пазух носа среднего уха ангина фарингит ларингит трахеит бронхит пневмония плеврит);
  • — хирургические инфекции (нагноения ран ожоги абсцесс флегмона фурункулы карбункулы гидраденит панариции парапроктит мастит бурсит остеомиелит);
  • — урогенитальные инфекции (уретрит цистит пиелонефрит кольпит эндометрит сальпингоофорит);
  • — энтеральные инфекции (гастроэнтероколит холецистит) дисбактериоз кишечника;
  • — генерализованные септические заболевания;
  • — гнойно-воспалительные заболевания новорожденных (омфалит пиодермия конъюнктивит гастроэнтероколит сепсис и др.);
  • — другие заболевания вызванные бактериями Proteus.
  • С профилактической целью препарат используют для обработки послеоперационных и свежеинфицированных ран а также для профилактики внутрибольничных инфекций по эпидемическим показаниям.
  • Важным условием эффективной фаготерапии является предварительное определение фагочувствительности возбудителя.

Противопоказания:

Гиперчувствительность к компонентам препарата.

Применение данного медицинского препарата при беременности и в период кормления грудью возможно при наличии инфекций вызванных фагочувствительными штаммами бактерий (по рекомендации врача).

Способ применения и дозы:

Препарат используют для приема внутрь (через рот) ректального введения аппликаций орошений введения в полости ран вагины матки носа пазух носа и дренированные полости.

Рекомендуемые дозировки препарата.

ВОЗРАСТ ПАЦИЕНТА ДОЗА НА 1 ПРИЕМ (мл)
внутрь в клизме
0-6 мес 5 5-10
6-12 мес 10 10-20
от 1 года до 3 лет 15 20-30
от 3 до 8 лет 15-20 30-40
от 8 лет и старше 20-30 40-50
  1. Лечение гнойно-воспалительных заболеваний с локализованными поражениями должно проводиться одновременно как местно так и приемом препарата внутрь в течение 7-20 дней (по клиническим показаниям).
  2. В случае если до применения бактериофага для лечения ран применялись химические антисептики рана должна быть тщательно промыта стерильным 09 % раствором натрия хлорида.
  3. В зависимости от очага инфекции бактериофаг применяют:
  1. В виде орошения примочек и тампонирования в объеме до 200 мл в зависимости от размеров пораженного участка. При абсцессе после удаления гнойного содержимого с помощью пункции препарат вводят в количестве меньшем чем объем удаленного гноя. При остеомиелите после соответствующей хирургической обработки в рану вливают бактериофаг по 10-20 мл.
  2. При введении в полости (плевральную суставную и другие ограниченные полости) до 100 мл оставляют капиллярный дренаж через который бактериофаг вводят в течение нескольких дней.
  3. При циститах пиелонефритах уретритах препарат принимают внутрь. В случае если полость мочевого пузыря или почечной лоханки дренированы бактериофаг вводят через цистостому или нефростому 1-2 раза в день по 20-50 мл в мочевой пузырь и по 5-7 мл в почечную лоханку.
  4. При гнойно-воспалительных гинекологических заболеваниях препарат вводят в полость вагины матки в дозе 5-10 мл ежедневно однократно при кольпите — по 10 мл орошением или тампонированием 2 раза в день. Тампоны закладывают на 2 часа.
  5. При гнойно-воспалительных заболеваниях уха горла носа препарат вводят в дозе 2-10 мл 1-3 раза в день. Бактериофаг используют для полоскания промывания закапывания введения смоченных турунд (оставляя их на 1 час).
  6. При энтеральных инфекциях дисбактериозе кишечника препарат принимают внутрь 3 раза в день за 1 ч до приема пищи в течение 7-20 дней по клиническим показаниям. Возможно сочетание двукратного приема внутрь с однократным ректальным введением разовой возрастной дозы бактериофага в виде клизмы после опорожнения кишечника.

Применение бактериофага у детей (до 6 месяцев).

При сепсисе энтероколите новорожденных включая недоношенных детей бактериофаг применяют в виде высоких клизм (через газоотводную трубку или катетер) 2-3 раза в сутки в дозе 5-10 мл. При отсутствии рвоты и срыгивания возможно применение препарата через рот. В этом случае он смешивается с грудным молоком.

Возможно сочетание ректального (в виде высоких клизм) и перорального (через рот) применения препарата. Курс лечения 5-15 дней. При рецидивирующем течении заболевания возможно проведение повторных курсов лечения.

С целью профилактики сепсиса и энтероколита при внутриутробном инфицировании или опасности возникновения внутрибольничной инфекции у новорожденных детей бактериофаг применяют в виде клизм 2 раза в день в течение 5-7 дней.

При лечении омфалита пиодермии инфицированных ран препарат применяют в виде аппликаций ежедневно двукратно (марлевую салфетку смачивают бактериофагом и накладывают на пупочную ранку или пораженный участок кожи).

Побочные эффекты:

Не установлены.

Передозировка:

Симптомы передозировки меры по оказанию помощи при передозировке не установлены.

Взаимодействие:

Применение бактериофага не исключает использования других антибактериальных препаратов.

Особые указания:

Перед использованием флакон с бактериофагом необходимо взболтать и просмотреть. Препарат должен быть прозрачным и не содержать осадка.

Внимание! При помутнении препарат не применять!

  • Вследствие содержания в препарате питательной среды в которой могут развиваться бактерии из окружающей среды вызывая помутнение препарата необходимо при вскрытии флакона соблюдать следующие правила: тщательно мыть руки;
  • — обработать колпачок спиртсодержащим раствором;
  • — снять колпачок не открывая пробки;
  • — не класть пробку внутренней поверхностью на стол или другие предметы;
  • — не оставлять флакон открытым;
  • — вскрытый флакон хранить только в холодильнике.
  • Вскрытие флакона и извлечение необходимого объема препарата может проводиться стерильным шприцем путем прокола пробки.
  • Препарат из вскрытого флакона при соблюдении условий хранения вышеперечисленных правил и отсутствии помутнения может быть использован в течение всего срока годности.

Влияние на способность управлять трансп. ср. и мех.:

Сведения о возможном влиянии лекарственного препарата на способность управлять транспортными средствами механизмами отсутствуют.

Форма выпуска/дозировка:

Раствор для приема внутрь местного и наружного применения.

Упаковка:

Во флаконах по 20 или 100 мл 4 или 10 флаконов по 20 мл или 1 флакон по 100 мл с инструкцией по применению в пачке из картона.

Условия хранения:

Подбор методики выделения бактериофагов рода Proteus

АННОТАЦИЯ

В статье описаны результаты исследований по подбору максимально результативной методики для выделения бактериофагов, специфичныхбактериям родаProteus.

Установлено, что методом индукции (воздействие ультрафиолетовых лучей) выделить бактериофаги не удалось: профаг у 16 исследованных бактерий рода Proteus не был выявлен.

Методика выделения фагов из объектов окружающей среды дала положительные результаты — из 94 проб сточных вод, фекалий, смывов с клеток, почвы с территории ферм было выделено 8 бактериофагов, специфичных к бактериям рода Proteus.

Была модифицирована методика выделения бактериофагов: при выделении фага из объектов ветеринарно-санитарного надзора по классической методике Гольдфарба Д.М. (1961) этап высева цетрифугата методом агаровых слоев по Gracia (1936) был заменен в протоколе исследований на этап высева методом Отто «стекающая капля».

ABSTRACT

In article results of researches on selection of the most productive technique for allocation of the bacteriophages specific to sort Proteus bacteria are described.

It is established that the induction method (influence of ultraviolet rays) hasn't succeeded to allocate bacteriophages: the pro-phage at 16 studied bacteria of the sort Proteus hasn't been revealed.

The technique of allocation of phages from objects of the environment has yielded positive results — from 94 tests of sewage, excrements, washouts from cages, soils from the territory of farms 8 bacteriophages specific to sort Proteus bacteria have been allocated.

The technique of separation of bacteriophages was modified: in case of separation of a phage from objects of veterinary sanitary inspection by a classical technique of Goldfarb D.M. (1961) the stage of seeding of a tsetrifugat by method of agar layers on Gracia (1936) was replaced in the protocol of researches with a seeding stage with Otto's method «the refluxing drop».

По литературным данным бактерии широко распространены во внешней среде и обладают высокой устойчивостью к факторам внешней среды, в незначительном количестве обитают в кишечнике здоровых животных, человека и птиц, часто становятся причиной болезни молодняка сельскохозяйственных животных и птицы, находящихся в иммунодепрессивном состоянии и наиболее подверженных стрессам [1, с. 23; 2, с. 30]. Известно, что вспышки протейной инфекции регистрируются преимущественно спорадически, в случаях эпизоотии в стаде,  бактерии рода Proteus играют сопряженную роль секундарной инфекции при смешанном (ассоциативном) инфекционном поражении [5, с.174; 6, с. 35; 10, с. 77]. Бактерии рода Proteus – прямые, подвижные грамотрицательные палочки 0,4-0,8х1-3 мкм, большинство штаммов обладают способностью к роению, образуя на скошенной поверхности агара вуалеобразный голубоватый налет с характерным гнилостным запахом, они отличаются от других энтеробактерий наличием фенилаланиндезаминазы [11, с.8].

Для диагностики, лечения и профилактики дисбиозов, возбудителем которых являются протеи в смешанной или монокультурах, в медицинской практике применяются фаговые биопрепараты. В ветеринарии данные методики не нашли широкого распространения, что связано с ограниченным количеством специфических бактериофагов на фармацевтическом рынке.

  • Цель и задачи исследований
  • Цель работы – выделение фагов, специфичных для бактерий рода Proteus, из патологического материала и объектов санитарного надзора животноводческих и птицеводческих помещений из хозяйств, неблагополучных по желудочно-кишечным заболеваниям, которые могут быть использованы с целью конструирования фагового биопрепарата для диагностики, профилактики и лечения дисбиозов, возбудителем которых являются протеи в смешанной или монокультурах, и их селекция.
  • Для выполнения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи:
  • —  провести эксперименты по выделению бактериофагов методом индукции на штаммах Proteus;
  • —  провести эксперименты по выделению бактериофагов Proteus из объектов окружающей среды;
  • —  подобрать оптимальные параметры культивирования выделенных бактериофагов и способы очистки бактериофагов от индикаторной культуры.
  • Методика исследований

Штаммы бактерий рода Proteusбыли выделены коллективом авторов изпатологического материала и фекалии от телят, поросят и птицы (куры и утки) с клиническими признаками дисбактериоза, фекалии и смывы животноводческих и птицеводческих хозяйств, неблагополучных по желудочно-кишечным заболеваниям Ульяновской и Самарской областей.

Для исследований было взято 94 пробы патологического материала (трупы телят, поросят и кур, объекты санитарного надзора животноводческих и птицеводческих помещений из хозяйств, неблагополучных по желудочно-кишечным заболеваниям (сточные воды, фекалии, смывы с клеток, почва с территории животноводческих ферм) Ульяновской, Самарской и Пензенской областей).

Выделение бактериофагов и подбор оптимальных параметров их культивирования проводили с использованием методик, опробированных сотрудниками кафедры микробиологии, вирусологии, эпизоотологии и ВСЭ ФГБОУ ВО Ульяновская ГСХА [9, с.26; 12, с. 88; 13, с.186; 14, с. 197].

В исследованиях применяли питательный бульон ТУ 10-02-02-789-176-94 (ООО «БиоКомпас-С», РФ), питательный агар для культивирования микроорганизмов  сухой (ГРМ-агар) ТУ 9398-020-78095326-2006 (ФБУН ГНЦ ПМБ, РФ), генцианвиолет 548-62-9 (ЗАО «Вектон», РФ), трихлорметан стабилизированный 0,6-1 % этанола (хлороформ) ч.д.а. ТУ 2631-066-44493179-01. Контроль специфической активности бактериофагов проводили с помощью специально подобранных наборов контрольных штаммов. Концентрацию микробных клеток определяли с помощью оптического стандарта мутности (ОСО 42-28-85 на 10 ед. производства ГИСК им. Л.А. Тарасевича).

Результаты исследований

В первой серии экспериментов на 16 культур бактерий рода Proteus, которые мы исследовали как «лизогенные», воздействовали индуцирующим фактором (применяли воздействие на бактерии ультрафиолетовых лучей).

Анализ литературных данных свидетельствует о том, что при действии на лизогенные культуры индуцирующим фактором продукция фага в значительной степени возрастает, поэтому применяя данную методику удается выявить бактериофаг в значительно большем проценте случаев, чем при изучении только спонтанной его продукции [3, с. 8; 4, с.10].

В качестве источника ультрафиолетовых лучей применялась бактерицидная лампа, 80 % энергии которой приходится на длину волны 2537 Ǻ. Исследуемые культуры в период эксперимента (16 культур бактерий, идентифицированных как Proteus) находились в экспоненциальной фазе роста.

Суточная культура бактерий разводилась в соотношении 1:100 в фосфатном буфере с рН 7,6. Разведение бактерий в объеме 2 мл помещали в чашку Петри и облучали в течение 20 (25, 30, 35, 40) секунд на расстоянии 40 (45, 50, 55, 60) см.

Затем облученные культуры рода Proteus засевались на мясо-пептонный бульон (МПБ) комнатной температуры (20-22 0С) в соотношении 1:100. Эксперимент проводился в полузатемненном помещении с целью предохранения облученных бактерий рода Proteus от фотореактивации.

Посевы инкубировали при 36±1 0С в течение 6,5-7,0 часов, после чего делали высев методом агаровых слоев по Gracia (1936).

Известно, что лизогения широко распространена среди всех систематических групп микроорганизмов, но нам не удалось выявить профаг у выделенных культур рода Proteus.

Второй этап исследований был посвящен выделению бактериофагов изобъектов ветеринарно-санитарного надзора.

Для исследований был произведен отбор 94 проб патологического материала (трупы телят, поросят и кур, объекты ветеринарно-санитарного надзора животноводческих и птицеводческих помещений из хозяйств, неблагополучных по желудочно-кишечным заболеваниям (сточные воды, фекалии, смывы с клеток, почва с территории животноводческих ферм)).

Первоначально готовили разведения из объектов исследований в МПБ в соотношении 1:10, добавляли в концентрации 104 КОЕ /мл по 1,0 мл каждого из 16 штаммов бактерий рода Proteus. Колбы с пробами ставили в термостат на 24 часа при температуре 36±1 0С.

Затем пробы фильтровали через ватно-марлевый фильтр для освобождения от механических примесей. После этого содержимое колбы разливали в стерильные пробирки, центрифугировали при 3000 об.

/мин в течение 30 минут, далее прогревали в водяной бане при 62±2 0С в течение 30 минут с целью подавления роста грамотрицательных бактерий.

  1. Каждый исследуемый фильтрат исследовался нами на наличие фага методом Отто «стекающая капля».
  2. Результаты оценивали следующим образом: — отсутствие лизиса;
  3. + лизис по ходу стекания капли;
  4. ++ лизис по ходу стекания капли и наличие стерильных пятен;
  5. +++ наличие стерильного пятна и зон лизиса.
  6. Установлено, что на газоне культур 16 культур бактерий рода Proteus выявлены зоны лизиса, оцененные в +, ++ и +++ (один, два и три креста) из проб сточных вод 1 (на индикаторной культуреProteusvulgaris1 — зона лизиса ++), из пробы почвы 2 (на культуреProteusvulgaris 3 – зона лизиса — +++), из фекалий КРС (на культуреProteusvulgaris 13 – зона лизиса — +); смыв с клетки (на индикаторной культуре Proteusvulgaris 16 — зона лизиса была оценена на +++); сточные воды 12 (на культуреProteusvulgaris 33 – зона лизиса — +); сточные воды 5 (на культуреProteusvulgaris 28 – зона лизиса — ++); из пробы почвы 4 (на культуреProteusvulgaris 38 – зона лизиса — ++); фекалии свиней (на культуреProteusmirabilis12 – зона лизиса —  +).

При выделении фага из объектов ветеринарно-санитарного надзора по классической методике Гольдфарба Д.М. (1961) [3, с. 6] этап высева цетрифугата методом агаровых слоев по Gracia (1936) был заменен в протоколе исследований на этап высева методом Отто «стекающая капля». Это было сделано с целью экономии расходных материалов и снижения трудозатрат.

Также нами было установлено, что при первичном выявлении бактериофага метод Отто позволяет четко видеть его наличие или отсутствие, в то время как метод агаровых слоев по Gracia (1936) затрудняет этап «визуального выявления бактериофага на газоне культуры».

Для подтверждения мы провели эксперименты, заключающиеся в том, что каждый из 8 фильтратов был исследован на наличие фага методом агаровых слоев по Gracia (1936).

Установлено, что на газоне культур Proteusvulgaris 1 , Proteusvulgaris 3, Proteusvulgaris 13, Proteusvulgaris 16, Proteusvulgaris 33, Proteusvulgaris 28, Proteusvulgaris 38, Proteusmirabilis12 выявлены зоны лизиса. Затраты на постановку эксперимента в несколько раз больше и при аналогичном результате, что и при применении метода Отто.

Нами из 94 проб объектов ветеринарно-санитарного надзора было выделено 8 бактериофагов, специфичных для штаммовProteusvulgarisи Proteusmirabilis.

Заключение

Были проведены исследования по выявлению бактериофагов, специфических к бактериям ProteusvulgarisиProteusmirabilisметодом индукции из выделенных нами ранее протейных культур.

Были получены отрицательные результаты, которые не расходятся с данными исследователей, занимавшихся выделением бактериофагов семейства Enterobacteriaceae, утверждающих, что наиболее перспективным является методика выделения бактериофагов из объектов окружающей среды [7, с. 183; 8, с. 85; 11, с. 10].

Из 94 проб объектов ветеринарно-санитарного надзора животноводческих и птицеводческих помещений из хозяйств, неблагополучных по желудочно-кишечным заболеваниям, было выделено 8 бактериофагов, специфичных к бактериям рода Proteus. Установлено, что объектами для выделения вирулентных бактериофагов родаProteusявляютсясточные воды, фекалии, смывы с клеток, почва с территории животноводческих ферм.

Исследования проводятся при поддержке государства в лице ФГБУ «Российский фонд фундаментальных исследований» по научному проекту «Геномика и биология кандидатных бактериофагов для терапии энтеробактериальных инфекций в ветеринарной медицине» №16-44-732038/16 от 03.11.2016 г.

Список литературы:

Бактерия протей: общая микробиология рода, виды протейных инфекций, диагностика и лечение

Бактерия протей относится к условно патогенным микроорганизмам и обычно не причиняет организму человека вреда. Однако при определённых условиях некоторые виды этого микроба становятся причиной заболеваний, которые с трудом поддаются антибиотикотерапии и потому считаются серьёзной медицинской проблемой. Особенно опасны вызванные протеем внутрибольничные инфекции.

Характеристика рода Протей

Все представители рода протеус — грамм-отрицательные палочки и факультативные анаэробы, т. е. при необходимости могут переходить на бескислородный тип метаболизма.

Характерным местом их обитания являются гниющие растительные и животные останки. В небольшом количестве эта бактерия составляет микрофлору человека и животных.

Протей также обнаруживается в почве и загрязнённой органикой воде.

Оптимальный рост протея наблюдается при температуре 37 градусов и значениях ph 7,2−7,4 (слабощелочная среда). Диапазон, при котором бактерия сохраняет активную жизнедеятельность, находится в пределах от 20 до 38 градусов. По типу питания этот микроорганизм — хемооранотроф (для поддержания жизненных процессов использует энергию химических связей, органику получает из окружающей среды).

Как и другие представители энтеробактерий, протей имеет в своём составе соматический О-антиген и жгутиковый Н-антиген, которые используются для типирования некоторых видов этой бактерии.

Положение в биологической систематике

В микробиологии существует две системы классификации: фенотипическая и филогенетическая. Первый метод систематики более старый и довольно условный.

Он объединяет микроорганизмы в группы на основании общих черт в строении и жизнедеятельности.

В филогенетической систематике распределение бактерий по категориям зависит от уровня генетического сходства между различными таксонами, которое определяется анализом последовательности гена 16-S-рибосомальной РНК.

По фенотипической классификации род Proteus относится к группе анаэробных споронеобразующих палочек и входит в семейство кишечных бактерий (Enterobacteriaceae).

В филогенетике этот таксон принадлежит обширному филуму протеобактерий, насчитывающему более двух тысяч видов.

Полная структура систематики протея по направлению от высшей категории к низшей соответствует следующей схеме:

  1. Царство — Bacteria (бактерии).
  2. Филум — Proteobacteria (протеобактерии).
  3. Класс — Gammaproteobacteria (гаммапротеобактерии).
  4. Порядок — Enterobateriales (кишечные бактерии).
  5. Семейство — Enterobacteriaceae.
  6. Род — Proteus (протей).

Генотипическая классификация достоверно отражает родство между группами бактерий, но при этом не всегда совпадает с фенотипической. Последняя весьма удобна при изучении различных свойств микроорганизмов.

На настоящий момент род proteus включает пять видов. Некоторые из них дифференцируются на биотипы, границы между которыми весьма условны даже на молекулярно-генетическом уровне.

Морфология и рост в культуре

По морфологической структуре протейные микроорганизмы представляют собой прямые палочки с закруглёнными концами толщиной 0,4−0,8 мкм и длиной от 1 до 3 мкм. Иногда встречаются кокковидные и нитевидные формы, что характеризует склонность этих микроорганизмов к полиморфизму.

Большинство протейных бактерий подвижны благодаря перитрихам (нитевидным структурам, покрывающим всю поверхность клетки), но присутствуют и так называемые О-формы, лишённые жгутиков.

Особых структур для защиты от неблагоприятных условий среды, к которым относят споры и капсулы, протей не образует.

К питательным средам эти бактерии не требовательны. Жгутиковые формы на МПА (мясопептонном агаре) дают ползучий рост в виде нежной вуали голубовато-дымчатого цвета. О-форма в той же среде образует крупные колонии с ровными краями. В мясопептонном бульоне (МПБ) протей вызывает помутнение среды с образованием плёнки на поверхности.

Биохимические свойства

Эти признаки отражают особенности обмена веществ рода протеус и активно используются при видовой идентификации. Протей ферментирует глюкозу, образуя кислоту и небольшое количество газа, устойчив к цианиду. Лактозу и маннит бактерия в метаболизме не использует. К характерным особенностям протея можно отнести выработку ферментов уреазы и фенилаланиндезаминазы.

Видовой состав

С момента обнаружения протейного микроорганизма в 1885 году до нашего времени видовая классификация этой бактерии сильно менялась.

В основном, это было связано со слабой фенотипической дифференциацией внутри рода и высокой степенью сходства с представителями таксонов Morganella и Providencia.

В итоге глубокий фенотипический анализ в совокупности с филогинетическим методом позволили выделить следущие виды протея:

  • Proteus vulgaris — типовой вид рода Протей (вульгарис в этом случае переводится с латыни как «обычный», а не «вульгарный»).
  • Proteus mirabilis — чаще других представителей обнаруживается у больных протейной инфекцией.
  • Proteus penneri — единственный условно-патогенный вид протея, не разделённый на сер.
  • Proteus myxofaciens — обнаружен в живых и мёртвых личинках непарного шелкопряда.
  • Proteus gauseri — назван в честь немецкого учёного Гауса, раньше считался биогруппой типовой бактерии.

Все эти виды имеют одинаковую морфологическую характеристику и отличить их можно только по некоторым биохимическим признакам или по генетической последовательности.

Ранее входившая в род proteus бактерия P. morganii сейчас выделена в самостоятельный род Morganeus с типовым представителем Morganella morganii. Этот условно-патогенный сапрофит способен вызывать инфекции по типу протейной. Морганелла и протеус обладают уреазной активностью, что даёт им возможность размножаться в мочеполовой системе человека.

Особенности протейной инфекции

Для организма человека потенциально патогенны три вида из пяти: P. vulgaris, P. mirabilis и P. penneri. К заболеванию может привести интенсивное размножение протея внутри организма (эндогенная инфекция) или попадания большой дозы возбудителя из окружающей среды.

В первом случае избыточный рост бактерии происходит на фоне сильного ослабления иммунитета, вызванного другими заболеваниями или травмами. Развитие инфекции возможно также в результате угнетения нормальной микрофлоры кишечника, что нередко встречается у детей.

Второй тип инфекции (экзогенный) в основном характеризует развитие пищевой инфекции при прохождении протея через пищеварительный тракт. Из внешней среды бактерия может попасть в организм тремя путями:

  • Алиментарным — самый распространённый способ передачи, характеризует проникновение возбудителя в организм вместе с пищей (чаще всего с белковыми продуктами после долгого срока хранения);
  • Водным — может произойти при заглатывании воды из заражённого протеем водоёма;
  • Контактно-бытовым — попадание в пищевод через грязные руки после контакта с обсеменёнными бактерией предметами.

Однако входными воротами инфекции служит не только пищеварительный тракт. Так, при попадании на повреждённые участки человеческого тела (ожоги, раны, язвы и т. д. ) протей вызывает гнойно-воспалительный процесс. Такое характерно для госпитальной инфекции.

Клиническая картина заболеваний

Чаще всего заболевания, вызванные Proteus spp., протекают по типу пищевой токсикоинфекции. В этом случае клинические проявления связаны с попаданием в кровь эндотоскина, который высвобождается при массовой гибели бактерий в желудочно-кишечном тракте. Тяжесть симптоматики зависит от количества попавшего в организм возбудителя.

В качестве вторичной инфекции протей может вызывать множество гнойно-воспалительных заболеваний, таких как цистит, пневмонию, плеврит, менингит, нагноение ран и ожоговых поверхностей, остеомиелит, сепсис и т. д.

Симптоматика этих патологических процессов зависит от локализации возбудителя и в целом соответствует картине любого воспаления (озноб, повышение температуры, слабость, нарушение функционирования поражённого органа, очаговая боль и др.).

Обычно протейные инфекции такого типа протекают в ассоциации с другими условно-патогенными микроорганизмами и с трудом поддаются лечению. На фоне общей ослабленности организма протей может привести к очень тяжёлым формам воспаления вплоть до летального исхода. Такое возможно при инфицировании госпитальными штамамми, приобретшими устойчивость ко многим антибиотикам.

Чрезмерное размножение естественной протейной микрофлоры в кишечнике приводит к появлению длительных желудочно-кишечных расстройств. Такие заболевания протекают по типу дисбактериоза, энтероколита или гастроэнтерита и сопровождаются характерной симптоматикой (нарушение пищеварения и стула, боли в области живота, тошнота, урчание, аномальная структура каловых масс и т. д. ).

Лабораторная диагностика

Основной метод выявления протейной инфекции — бактериологический, то есть использование биологических материалов пациента для посева на дифференциально-диагностические среды. В случае обнаружения многочисленных колоний Proteus spp. диагноз подтверждается. Материалом для посева могут служить испражнения, рвота, гной, мокрота, ликвор, кровь.

Обнаружение протея в испражнениях

При посеве из кала производится комплексная оценка содержания всех условно-патогенных бактерий в кишечнике. Для этого подсчитывается количество КОЕ (колониеобразующих единиц), которое в норме не должно превышать значение 10 4.

Обнаружение большого количества Proteus spp. в кале ребёнка или взрослого свидетельствует о протейном дисбактериозе. Причиной серьёзного нарушения микрофлоры могут быть и другие микроорганизмы, включая близкий к протею вид морганеллу моргани.

Обнаружение бактерии морганеллы или протеуса в моче называется бактериурией и свидетельствует об инфекции мочеполовой системы.

Методы лечения

В случае пищевой токсикоинфекции лечение имеет неспецефический характер и направлено, в основном, на устранение симптомов и дезинтоксикацию (обильное питьё, промывание желудка и т. д. ).

При гнойной-воспалительных заболеваниях основу лечения составляет использование препаратов, угнетающих или убивающих протей (антибиотики, противопротейные бактериофаги).

Также необходима симптоматической терапия совместно с проведением мероприятий, направленных на общее укрепление организма.

В случае затяжного вялотекущего воспалительного процесса, плохо поддающегося действию антибиотиков, применяются аутовакцины.

При дисбактериозе, вызванном бактерией протей, лечение наряду с противомикробной терапией должно включать препараты, восстанавливающие нормальною микрофлору (пробиотики и синбиотики).

Применение антибиотиков

Главная проблема использования антибактериальных препаратов против протея — высокая степень его устойчивости к антибиотикам. Самый резистентный в этом отношений вид — Proteus vulgaris, однако инфекции чаще вызывает Proteus mirabilis. Анализ чувствительности этих видов к антибиотикам проводился при их биологическом изучении.

Необходимо учитывать, что повидовая характеристика восприимчивости носит обобщённый характер, а судить о конкретном штамме протея можно только на основе индивидуальной антибиотикограммы.

Поэтому назначать противомикробные препараты без проведения предварительных тестов на чувствительность к антибиотикам нельзя.

Неправильно выбранное лекарство не только не убьёт протей, но сократит количество нормальной микрофлоры, что значительно улучшит условия для развития инфекции.

Использование бактериофагов

Бактериофаги — это специфические вирусы бактерий с определённым спектром хозяев, что является значительным преимуществом перед антибиотиками, убивающими полезную микрофлору вместе с патогенной.

Кроме того, попадая в культуру протея, фаговые частицы размножаются и заражают другие бактериальные клетки того же вида.

Таким образом, бактериофаг — это высокоэффективное живое лекарство с избирательным действием, полностью безопасное для здоровья человека.

В лечении протейных инфекций бактериофаги чаще всего применяют при желудочно-кишечных расстройствах, включая дисбактериоз. Существует комплексный препарат «Интести», содержащий набор фагов против нескольких представителей патогенной микрофлоры кишечника, в том числе протеуса.

Можно использовать также чистый протейный или колипротейный бактериофаг. Эти препараты эффективны и при местных воспалительных процессах.

Бактериофаг протейный

Обладает способностью специфически лизировать бактерии Proteus.

Лечение и профилактика гнойно-воспалительных и энтеральных заболеваний, вызванных бактериями Р. vulgaris, Р.

mirabilis в составе комплексной терапии: заболевания уха, горла, носа, дыхательных путей и легких (воспаления пазух носа, среднего уха, ангина, фарингит, ларингит, трахеит, бронхит, пневмония, плеврит); хирургические инфекции (нагноения ран, ожоги, абсцесс, флегмона, фурункулы, карбункулы, гидраденит, панариции, парапроктит, мастит, бурсит, остеомиелит); урогенитальные инфекции (уретрит, цистит, пиелонефрит, кольпит, эндометрит, сальпингоофорит); энтеральные инфекции (гастроэнтероколит, холецистит), дисбактериоз кишечника; генерализованные септические заболевания; гнойно-воспалительные заболевания новорожденных (в т.ч. омфалит, пиодермия, конъюнктивит, гастроэнтероколит, сепсис); другие заболевания, вызванные бактериями Proteus.

С профилактической целью применяют для обработки послеоперационных и свежеинфицированных ран, а также для профилактики внутрибольничных инфекций по эпидемическим показаниям.

Гиперчувствительность к компонентам бактериофага.Индивидуальный, в зависимости от возраста и показаний. Способ применения — внутрь, для ректального введения, аппликаций, орошений, введения в полости ран, вагины, матки, носа, пазух носа, дренированные полости.Применение бактериофага не исключает использования других антибактериальных препаратов.

Важным условием эффективной фаготерапии является предварительное определение фагочувствительности возбудителя.Применение бактериофага при беременности и в период кормления грудью возможно при наличии инфекций, вызванных фагочувствительными штаммами бактерий (по рекомендации врача).

Препарат разрешен для применения у детей и подростков в возрасте до 18 лет

Описание препарата Бактериофаг протейный основано на официально утвержденной инструкции по применению и утверждено компанией–производителем.Бактериофаг протейный — описание и инструкция предоставлены справочником лекарственных средств «Видаль»Предоставленная информация о ценах на препараты не является предложением о продаже или покупке товара. Информация предназначена исключительно для сравнения цен в стационарных аптеках, осуществляющих деятельность в соответствии со статьей 55 ФЗ «Об обращении лекарственных средств».Обнаружили ошибку? Выделите ее и нажмите Ctrl+Enter.

Ссылка на основную публикацию
Adblock
detector